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Diagnostische Methoden in der Pathologie

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Bei der intravitalen Diagnostik wird Gewebe vom lebenden Patienten gewonnen und analysiert.

Für die Zell- und Gewebeentnahme gibt es verschiedenen Möglichkeiten, wie z.B. Exfoliativ- und Punktionszytologie.

Je nachdem, welche Gewebe- oder Zellstrukturen angefärbt oder unterschieden werden sollen, stehen unterschiedliche Färbemethoden zur Verfügung. Neben den Übersichtsfärbungen HE, Giemsa und PAP gibt es weitere Spezialfärbungen (z.B. van Gieson, Azan).

Zu den Untersuchungsmethoden zählen u.a. die makroskopische Beurteilung, zytologische, histologische und immunhistochemische Untersuchungen und molekularbiologische Techniken.

Die postmortale Diagnostik wird bei einer natürlichen Todesursache in Form einer klinischen Obduktion von Pathologen durchgeführt. Sie spielt v.a. für die Qualitätssicherung in der Medizin eine Rolle. Bei nichtnatürlichen Todesfällen erfolgt die Obduktion in der Rechtsmedizin (gerichtliche Obduktion).

Der Pathologe stellt anhand seines Befundes die definitive Diagnose. Dabei muss er bedenken, dass eine bestätigte Krankheit – abgesehen von ihren Auswirkungen auf den Patienten – weitreichende arbeits-, sozial- und versicherungsmedizinische Konsequenzen haben kann. Deshalb muss die Diagnose immer mit größter Sorgfalt gestellt werden. Die „Begutachtung“ in der postmortalen Diagnostik kann Folgen für Lebensversicherung und Berufsgenossenschaft haben.

Bei der intravitalen Diagnostik werden Zellen oder Gewebe analysiert, die einem lebenden Patienten entnommen wurden. Zu den wichtigsten Aufgaben und Zielen der intravitalen Diagnostik gehören:

Artdiagnose eines Prozesses (neoplastisch, entzündlich, degenerativ)
Krebsfrüherkennung
Tumordiagnostik (Beurteilung der Dignität, des Tumortyps, des Stagings und der Vollständigkeit der chirurgischen Exzision).

Image description — Basalmembran

Die Basalmembran (siehe Pfeil) befindet sich unter dem Epithel der Luftröhre (HE-Färbung, Vergrößerung 100-fach).
(Quelle: Heinzeller et al., Histologie, Histopathologie und Zytologie für den Einstieg, Thieme, 2011)

Image description — Hochendotheliale Venole in der T-Zone

Die hohen Endothelzellen, das Lumen und der Extravasalraum der T-Zone sind in der Giemsa-Färbung bei 640-facher Vergrößerung gut zu erkennen. Die Pfeile weisen auf einige Lymphozyten, die die Gefäßwand durchdringen.
(Quelle: Lüllmann-Rauch, Asan, Taschenlehrbuch Histologie, Thieme, 2019)

Image description — Frühe Proliferationsphase

Die Abbildung zeigt das Endometrium in der frühen Proliferationsphase (9. Zyklustag). Im Stratum functionale sind unverzweigte, glatt konturierte Drüsenzellen zu erkennen. Unter dem Stratum functionale ist das Stratum basale zu erkennen. (Färbung: Eisenhämatoxylin-Pikrofuchsin nach van Gieson; Vergrößerung 5-fach.)
(Quelle: Kühnel, Taschenatlas Histologie, Thieme, 2014)

Image description — Retikuläre Fasern

Die Pfeile deuten auf Flachschnitte durch die retikulären Fasern um einen Nierentubulus, die durch die Versilberungsmethode (Gomori) sichtbar gemacht wurden. (Vergrößerung 720-fach.)
(Quelle: Lüllmann-Rauch, Taschenlehrbuch Histologie, Thieme, 2012 )

Image description — Schilddrüse

Charakteristisch für den Feinbau der Schilddrüse sind kugelige bis ovale Follikel. Diese sind von einem einschichtigen Epithel umgeben und mit homogenem Kolloid gefüllt. Im Kolloid sind die Schilddrüsenhormone T4 und T3 gespeichert. Die Höhe des Epithels ist von dessen Funktionszustand abhängig. Zum Zeitpunkt der Sekretspeicherung ist das Epithel des Kolloids platt, die Follikel groß und mit viel Kolloid gefüllt (links). In der Phase der Sekretbildung sind die Epithelzellen iso- bis hochprismatisch, die Follikel kleiner und nur wenig Kolloid vorhanden (rechts). Die Follikel werden von gefäßführendem Bindegewebe (blau) umhüllt. (Färbung: Azan; Vergrößerung 300-fach.)
(Quelle: Kühnel, Taschenatlas Histologie, Thieme, 2014)

Image description — Grampräparat von Staphylokokken (grampositiv)

Staphylokokken sind haufenförmig zusammengelagerte, grampositive Kokken.
(Quelle: Groß, KLB Medizinische Mikrobiologie und Infektiologie, Thieme, 2013)

Image description — Histologischer Nachweis der Hämochromatose

Berliner-Blau-Reaktion (Nachweis der Eisenablagerungen) im Leberbiopsat
(Quelle: Arastéh, Baenkler, Bieber et al., Duale Reihe Innere Medizin, Thieme, 2018)

Image description — Histopathologie bei zerebraler Amyloidangiopathie

Kongorot-Färbung: Nachweis von Amyloid-β (rötlich) in den Gefäßwänden.
(aus Hufschmidt, Lücking, Rauer et al., Neurologie compact, Thieme, 2017)

Image description — Mehrschichtiges unverhorntes Plattenepithel

Mehrschichtiges unverhorntes Plattenepithel des Ösophagus. Schichten von basal nach apikal: Stratum basale, Stratum parabasale, Stratum intermedium, Stratum superficiale. Das Zytoplasma der oberen Strata ist blass bei Goldner-Färbung (links): Die PAS-Färbung (rechts) macht das Glykogen der Zellen sichtbar (pink). Unter dem Epithel liegt die Lamina propria.
(Quelle: Lüllmann-Rauch, Asan, Taschenlehrbuch Histologie, Thieme, 2019)

Image description — Querschnitt durch die Lunge

Die Lunge mit Bronchiolus, Bronchiolus terminalis, Bronchiolus respiratorii, Ductus alveolares und zahlreiche Alveolen.
(Quelle: Ulfig, Kurzlehrbuch Histologie, Thieme, 2019)

Image description — Leberläppchen

Die vieleckigen Leberläppchen sind zum Teil von Periportalfeldern begrenzt. Im Zentrum des klassischen Leberläppchens verläuft die Zentralvene. Die Hepatozyten sind radiär zur Zentralvene in balkenartigen Platten angeordnet. Zwischen den Leberzellbalken verlaufen Lebersinusoide und Gallenkanälchen. (Färbung: Azan; Vergrößerung 40-fach.)
(Quelle: Kühnel, Taschenatlas Histologie, Thieme, 2014)

Image description — Uterus

Der Uterus lässt sich in Gebärmutterkörper (Korpus), Isthmus und Halsteil (Zervix) unterteilen. Der obere Teil des Korpus wird als Fundus bezeichnet. Die spaltförmige Lichtung des Korpus ist das Cavum uteri. Die Wand des Uterus ist von außen nach innen in Perimetrium, Myometrium und Endometrium gegliedert. (Färbung: Hämatoxylin-Eosin; Vergrößerung 5-fach.)
(Quelle: Kühnel, Taschenatlas Histologie, Thieme, 2014)

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zuletzt bearbeitet: 19.07.2022